Презентация на тему Метод Дригальского. Этапы выделения чистой культуры и ее идентификации

исследования в лабораторной диагностике.
Метод Дригальского основан на механическом разобщении

клеток.

плотной питательной среды с целью получения изолированных колоний.
Может

включать предварительную микроскопию исследуемого материала

в чашке Петри.
Для этого, приоткрыв левой рукой крышку,

петлёй или пипеткой наносят посевной материал на поверхность питательного агара по методу Дригальского.

Техника посева

отсев колонии, характерной для определенного вида на скошенный агар

или чашку Петри со свежим агаром для получения чистой культуры.

чашку Петри, удобную для подсчета колоний.
Подсчет колоний

жидких и плотных питательных средах.

Влияние кислорода на рост культуры

бактерий.

Температурные границы роста культуры бактерий.

Влияние рН питательной среды на рост культуры бактерий.

цвету, консистенции, контуру края, структуре и характеру поверхности:
по величине —

крупные (диаметр более 4—5 мм), средние (2—4 мм) и малые (1—2 мм)
по форме — круглые, розеткообразные, листовидные и т. д.
по цвету, зависящему от пигмента — белого, ярко-синего, красного цветов и т. д.
по консистенции — сухие, влажные, сочные, слизистые
по поверхности — гладкие, морщинистые, исчерченные, плоские, выпуклые, плосковыпуклые, вдавленные
по краю — с ровными, волнистыми, бахромчатыми краями
по структуре — могут иметь аморфную, зернистую, волокнистую внутреннюю структуру
в чистой культуре, выращенной на скошенном питательном агаре, характер роста может быть сухим, влажным, ползучим, складчатым, пигментированным

(продолжение)
Streptomyces
Рост изолированных колоний
Klebsiella pneumoniae

возбудителя чумы Y.pestis
«кружевной платочек»
Культуральные свойства бактерий

(продолжение)

Рост чистой культуры S. aureus

роста.
ПСИХРОФИЛЫ – оптимум от 0 до 200С
-

Vibrio marinus
- Pseudomonas fluorescens
- Yersinia enterocolitica, Yersinia pestis (от 4 до 400С)- факультативные психрофилы
МЕЗОФИЛЫ - оптимум 30 - 40⁰С (от 10 до 45оС)

ТЕРМОФИЛЫ - оптимум 45 - 65⁰С
- Bacillus stearotermophilus
- Thermoactinomyces vulgaris

роста бактерий.
Температура влияет на скорости ферментативных реакций,

состояние мембран и поддержание конформации белков и нуклеиновых кислот.
Для некоторых патогенных микроорганизмов повышение температуры является сигналом о попадании в организм человека, влияя на синтез их факторов патогенности.

большинство  микроорганизмов хорошо растёт при нейтральном рН – нейтрофилы

Актиномицеты

и бактерии, разлагающие мочевину, предпочитают среды с более высоким рН - алкалифилы (Vibrio cholerae)

Некоторые бактерии (например, M.tuberculosis, лактобациллы) и грибы  толерантны к кислой среде - ацидофилы

3 этапа – идентификация- определение вида – выделенной чистой

культуры по комплексу биологических свойств:
Морфологических
Тинкториальных
Культуральных
Биохимических
Антигенных
Токсигенных
Чувствительности к антибиотикам и др. лекарственным препаратам
Чувствительности к типовым диагностическим фагам

и их расположении в мазке, типе клеточной стенки и

способности к спорообразованию, что явно недостаточно для различения десятков тысяч видов микроорганизмов.
Дополнительную информацию может предоставить учет культуральных свойств – характера роста микроорганизмов на питательных средах. Современные дифференциально-диагностические среды, сочетающие различные хромогенные субстраты и индикаторы, позволяют на этапе первичного посева из исследуемого материала определять по культуральным свойствам отдельные наиболее значимые таксономические группы. Однако, они также не способны решить задачу определения вида для произвольной выделенной чистой культуры.
Полноценная видовая идентификация может производиться с использованием различных подходов. Некоторые из них применяются только в пределах отдельной таксономической группы – например, идентификация по антигенным свойствам для представителей рода Streptococcus. Но некоторые из подходов возможно использовать и для видовой идентификации широкого круга микроорганизмов:

заключается
в определении спектра ее ферментативной активности,
способности к

сбраживанию определенных субстратов
или синтез тех или иных конечных продуктов.

сухими дифференциально-диагностическими средами заполняется суспензией из чистой культуры бактерий

и инкубируется в термостате

– все тесты положительны, нижний – все отрицательны.
Вид системы

для стафилококков после инкубации. Верхний планшет – все тесты положительны, нижний – все отрицательны.

Через 18-24 часа проводится учёт цвета лунок и соотнесение полученных результатов с базой данных, которая может представлять собой как книгу, так и компьютерную программу

окрашенные продукты при их расщеплении бактериальными ферментами
Как и

при использовании классических дифференциально-диагностических сред лунки заполняют суспензией бактерий
Результат учитывают через 4 часа

- 8-канальный фотометр для считывания планшет со встроенным шейкером

и жидкокристаллическим дисплеем
инкубатор МТ-5 (внутренняя камера которого выполнена из нержавеющей стали) с жидкокристаллическим дисплеем
автоматическая 8-канальная электронная пипетка с зарядным устройством;
управляющий блок на базе персонального компьютера с программным обеспечением и принтером.

Анализатор для идентификации микроорганизмов и определения чувствительности к антибиотикам VITEK 2 Compact 30

основан на применении ферментов рестриктаз - эндонуклеазы, которые расщепляют

молекулы ДНК, разрывая фосфатные связи в определенных последовательностях нуклеотидов.
 В геноме конкретной таксономической единицы находится строго определенное (генетически задетерминированное) число участков узнавания для определенной рестриктазы.
Если выделенную из конкретного микроба ДНК обработать определенной рестриктазой, то это приведет к образованию строго определенного количества фрагментов ДНК фиксированного размера.
Размер каждого типа фрагментов можно узнать с помощью электрофореза в агарозном геле

Гель окрашивают бромистым этидием и фотографируют в УФ-излучении.
Таким способом можно получить рестрикционную карту определенного вида микробов

профиля бактерий.
Для этого из бактериальной клетки выделяют плазмидную

ДНК, которую разделяют электрофорезом в агарозном геле для определения количества и размеров плазмид.

оснований в оперонах, кодирующих рРНК, характеризуется наличием как консервативных

участков, которые подверглись малым изменениям в процессе эволюции и имеют сходное строения у различных бактерий, так и вариабельных последовательностей, которые родо- и видо-специфичны и являются маркерами при генетической идентификации.
Эти опероны представлены на бактериальной хромосоме в нескольких копиях.

полученные после обработки ее рестриктазами, содержат последовательности генов рРНК,

которые могут быть обнаружены методом молекулярной гибридизации с меченой рРНК соответствующего вида бактерий.
Количество и локализация копий оперонов рРНК и рестрикционный состав сайтов как внутри рРНК-оперона, так и по его флангам варьируют у различных видов бактерий.
На основе этого свойства построен метод  риботипирования, который позволяет производить мониторинг выделенных штаммов и определение их вида.
В настоящее время риботипирование проводится в автоматическом режиме в специальных приборах.

ПДРФ – полиморфизм длины рестрикционных фрагментов

использует данные о нуклеотидных последовательностях выделенных чистых культур.
Ген

16S рРНК выбран как универсальный маркер для видовой идентификации: он имеется в геномах всех прокариот и обладает сравнительно малой изменчивостью.
В большинстве случаев применимо следующее правило: совпадение у двух штаммов последовательностей этого гена на 97% и более свидетельствует, что они относятся к одному виду, в противном случае – к разным.
На сегодняшний день обязательным требованием для описания нового вида прокариот является публикация последовательности гена 16S рРНК в открытом доступе.

полимеразной цепной реакции с праймерами под ген 16S рРНК

с последующей очисткой ДНК и секвенированием по Сэнгеру (детально данные методы будут детально рассмотрены в разделе «Генетика бактерий»).
Далее последовательность сравнивается с компьютерной базой данных с использованием алгоритма BLAST (англ. Basic Local Alignment Search Tool - средство поиска основного локального выравнивания).

точности видовой идентификации бактерий, обладает наибольшей воспроизводимостью, применим к

прокариотам любых таксономических групп.
Из недостатков необходимо отметить сравнительную трудоемкость и длительность данного подхода, а также требование специализированной аппаратуры для полимеразной цепной реакции и секвенирования.

ионизации вещества, использующийся при масс-спектрометрии. Относится к т.н. «мягким»

способам ионизации, позволяющим ионизировать крупные биомолекулы без их деградации.
В основе метода лежит использование вспомогательного вещества - «матрицы», свойства которого обуславливают понижение деструктивных свойств лазерного излучения и ионизацию анализируемого вещества.
TOF (Time of Flight - вреямпролетный) – принцип устройства анализатора масс-спектрометра, в котором заряженные частицы разделяются по времени пролета определенного расстояния. При этом время пролета частицы пропорционально отношению массы данной частицы к ее заряду. 

MALDI – матрично-активированная лазерная десорбция/ионизация