Презентация на тему Супрамолекулярная химия в живой природе. Валиномицин. Родопсин. Тетрапиррольные макроциклы (Лекция 8)

трансмебранного транспорта ионов натрия (из клетки) и ионов калия

(внутрь клетки). Этот механизм обеспечивает концентрационный градиент и трансмембранную разность потенциалов.
Существование управляемой трансмембранной разности потенциалов мембраны является основой многих функций: возбуждения, возникновения потенциалов действия, проведения нервных импульсов, управления возбудимостью мембран, сокращения мышцы, секреции клеток желез, трансмембранного обмена веществ, восприятия, переработки информации и формирования управляющих воздействий, а также многх других неспецифических и специфических функций клеток, тканей, органов и систем органов.

неё уже есть электрический заряд на поверхности мембраны. Он

называется мембранный потенциал покоя.
Потенциал покоя - это разность электрических потенциалов между внутренней и наружной сторонами мембраны, когда клетка находится в состоянии физиологического покоя. Его средняя величина составляет -70 мВ (милливольт).
"Потенциал" - это возможность, он сродни понятию "потенция". Электрический потенциал мембраны - это её возможности по перемещению электрических зарядов, положительных или отрицательных. В роли зарядов выступают заряженные химические частицы - ионы натрия и калия, а также кальция и хлора. Из них только ионы хлора заряжены отрицательно (-), а остальные - положительно (+).
Таким образом, имея электрический потенциал, мембрана может перемещать в клетку или из клетки указанные выше заряженные ионы.

стороне мембраны отрицательных электрических зарядов в виде анионов и

недостаток положительных электрических зарядов в виде катионов, которые сосредотачиваются на её наружной стороне, а не на внутренней.
Внутри клетки - "отрицательность", а снаружи - "положительность".
Такое положение вещей достигается с помощью трёх явлений: (1) поведения мембраны , (2) поведения положительных ионов калия и натрия и (3) соотношения химической и электрической силы.
1. Поведение мембраны
В поведении мембраны для потенциала покоя важны три процесса:
1) Обмен внутренних ионов натрия на наружные ионы калия. Обменом занимаются специальные транспортные структуры мембраны: ионные насосы-обменники. Таким способом мембрана перенасыщает клетку калием, но обедняет натрием.
2) Открытые калиевые ионные каналы. Через них калий может как заходить в клетку, так и выходить из неё. Он выходит в основном.
3) Закрытые натриевые ионные каналы. Из-за этого натрий, выведенный из клетки насосми-обменниками, не может вернуться в неё обратно. Натриевые каналы открываются только при особых условиях - и тогда потенциал покоя нарушается и смещается в сторону нуля (это называется деполяризацией мембраны, т.е. уменьшением полярности).
2. Поведение ионов калия и натрия
Ионы калия и натрия по-разному перемещаются через мембрану:
1) Через ионные насосы-обменники натрий насильно выводится из клетки, а калий затаскивается в клетку.
2) Через постоянно открытые калиевые каналы калий выходит из клетки, но может и возвращаться в неё обратно через них же.
3) Натрий "хочет" войти в клетку, но "не может", т.к. каналы для него закрыты.

с плюсом внутри — протоны, голубые шарики — вода, красный цилиндр — C-конец белка;римскими

цифрами показаны сайты связывания ионов, Е1Р, Е2Р и так далее — так называются состояния насоса; D930 — остаток аспартата, с которым связывается один из протонов, Е958 — остаток глутамата, с которым связывается другой протон, Y1020 — остаток тирозина, расположенный на C-конце белка; extracellular — внеклеточное пространство, intracellular — внутриклеточное пространство. Изображение взято из статьи в Nature.

на своих сайтах связывания и один протон на глутаматном

остатке. Ионы натрия могут выйти во внеклеточное пространство только тогда, когда C-конец белка поменяет свое положение и перестанет затыкать ионный канал и по этому каналу пойдет вода, которая протонирует остаток аспартата (где находится сайт связывания для натрия). Когда ионы натрия выходят во внеклеточное пространство, им на смену приходят ионы калия. Тот протон, который был на глутамате, переходит на аспартат, а тот, что был на аспартате, покидает белок по открытому ионному каналу. Ионы калия входят во внутриклеточное пространство по одному каналу, а протон, который был на аспартате, — по другому. На смену ионам калия приходят ионы натрия. На глутаматный остаток «садится» протон, и цикл повторяется.

этого транспортного белка. Это полость, ведущая от C-конца белка

к аминокислоте аспартату, куда сядет цитоплазматический протон. Палочка указывает на аспартат (D930), показанный красным; Y1019 и Y1020 — остатки тирозина; желтым цветом показаны участки, мутации в которых вызывают гемиплегическую мигрень с сильными головными болями. Изображение взято из статьи в Nature.

супрамолекулярного устройства . Светособирающая часть клетки палочки содержит
фоточувствительный

красноватый пигмент, называемый родопсином (визуально
пурпурный). Он состоит из комплекса белка (опсин) и альдегида витамина А
(каротин), называемого ретиналем. Спектр поглощения родопсина чувствителен к
длинам волн, которые излучаются при низком уровне освещения; при
фотовозбуждении комплекс опсина и ретиналя (азометиновая функция C=NH+) претерпевает Цис-транс--изомеризацию.
Это вызывает деградацию циклического гуанозинмонофосфата (cyclic guanosine monophosphate, cGMP), что необходимо для поддержания
всегда существующего энергопоглощающего потока Na+ ионов, включающего в
себя «темновой ток» клетки, и, следовательно, для закрытия трансмембраннных
каналов. Это, в свою очередь, является причиной ощутимой гиперполяризации
внутри клетки и приводит к усилению исходного светового сигнала и генерации
нервного импульса .

полипептидная цепь состоит из 348 аминокислотных остатков), содержащий хромофорную

группу (хромофор). В молекуле родопсина находится ок. 60% гидрофобных аминокислотных остатков. В N-концевой области родопсина расположены две олигосахаридные цепи, ковалентно связанные с остатками аспарагина. Известна первичная структура родопсинов, выделенных из разл. источников. Хромофор большинства родопсинов-остаток 11-цис-ретиналя (см. Витамин А), связанный альдиминной связью с аминогруппой остатка лизина (у быка он находится в положении 296). Спектр поглощения у этих белков имеет три максимума-ок. 500, 350 и 280 нм. Первые два максимума обусловлены хромофором, третий-в осн. белковой частью молекулы. При поглощении кванта света начинается многоступенчатый процесс обесцвечивания, или фотолиза, родопсина (рис.2); квантовый выход фотолиза 0,67. На первой стадии (до образова-ния батородопсина) происходит изомеризация хромофора из 11-цис-формы в полностью транс-форму, а на стадии батородопсина начинаются конформац. изменения белка, сначала в месте расположения хромофора, а затем и в др. местах молекулы. Это приводит к образованию др. проме-жут. продуктов, различающихся по спектральным св-вам. 

для ионов Na+, благодаря чему эти ионы быстро проникают

внутрь наружного сегмента (высокий градиент в мембране концентрации ионов Na+ поддерживает Na+, К+-аденозинтрифосфатаза), диффундируют далее во внутр. сегмент и затем выводятся с помощью Na+, К+-насоса за счет энергии АТФ. Предполагают, что мол. механизм блокирования Na+-каналов инициируется метародопсином II (активированный родопсин), к-рый взаимод. с трансдуцином (G-белок, мол. м. 42 тыс.). Последний м. б. связан с гуанозиндифосфатом или гуанозинтрифосфатом (соотв. ГДФ и ГТФ). В трансдуцине, связанном с активированным родопсином, происходит обмен ГДФ на ГТФ. Одна молекула активированного родопсина до ее дезактивации способна активировать ок. 500 молекул трансдуцина. Трансдуцин с ГТФ активирует одну молекулу фосфодиэстеразы, к-рая за время одного цикла разлагает ок. 1000 молекул циклич. гуанозинмонофосфата (цГМФ). Уменьшение концентрации цГМФ приводит к закрытию натриевых цГМФ-регулируемых каналов, поток Na+ уменьшается, мембрана гиперполяри-зуется. Возникновение такой поляризации запускает р-ции световой адаптации клетки по принципу обратной связи. Закрытие Na+-каналов блокирует проникание Са2+ в наружный сегмент, в то же время выход Са2+ в результате Na+-Ca2+-обмена продолжается. Это приводит к активации гуанилатциклазы и частично, по-видимому, к ингибиро-ванию фосфодиэстеразы. В результате этого концентрация цГМФ увеличивается и Na+-каналы открываются.

кобаламины играют исключительно важную роль в жизни животных, растений

и бактерий. Эти ярко окрашенные соединения содержат в своем составе макроцикл, состоящий из четырех молекул пиррола. У порфиринов, имеющих крас-
ный цвет, пирролы соединены между собой метиновыми мостиками и макроцикл носит название “порфин” (1). В хлорофиллах, для которых характерна зеленая окраска, частично гидрированы один или два пиррола и молекула носит название “хлорин” (2) и “бактериохлорин” (3). Для кобаламинов,
важнейшим среди которых является витамин В12 , все четыре кольца частично гидрированы и вместо одного метинового мостика имеется непосредственная связь между двумя пирролами. Этот цикл называется коррином (4)

бактерий и морских водорослей и, в зависимости от условий,

в которых развивается организм, может включать окисление других субстратов, в частности H2S или Н2, вместо воды. У зеленых растений производительность фотосинтеза ~1 г глюкозы в 1 ч на 1 м2 поверхности листьев. Несмотря на сравнительно неэффективное использование доступной энергии излучения (меньше 1%), глобальность цикла, происходящего на Земле, потрясает: каждый год из СО2 и воды на свету образуется 200 млрд т углеводных эквивалентов (СН2О)Л. Солнечный свет, достигающий поверхности Земли, включает видимый диапазон длин волн 380—750 нм), однако существует также значительный вклад от света больших длин волн (и потому меньшей энергии) — примерно до 1000 нм. Для эффективного фотосинтетического преобразования света в этом диапазоне энергий требуется множество различных пигментов (световых рецепторов или хромофоров), каждый из которых чувствителен к определенной части спектра. Эти пигменты включают хлорофилл а и бактериохлорофилл а (рис. 2.11), так же как и ряд родственных рецепторов, основанных на тетрапиррольных макроциклах и с гостем, и без гостя. Пигменты расположены в складчатой фотосинтетической мембране с большой площадью поверхности, а потому и с большим сечением захвата фотонов

с низкоэнергетическим пи-пи*-переходом. Коэффициент экстинкции велик (~10^5 М^-1 x

см^-1) и на длинноволновом, и на коротковолновом крае спектра. Комплементарные (дополняющие) цвета — голубой (при коротковолновом поглощении) и желтый (при длинноволновом поглощении) — комбинируются, давая характерный зеленый цвет свежих листьев (Лямбда mах 455 и 630 нм). Бактериохлорофиллы содержат два частично гидрогенизированных пиррольных кольца, и,следовательно, их поглощение сдвинуто в сторону больших длин волн, достигая
ближней инфракрасной (ИК-) области.

Координированный ион Mg2+ в хлорофилле играет роль посредника в
расположении пигментов. Пигменты пространственно закрепляются в определенном месте с помощью длинной фитильной боковой цепи, глубоко погруженной в фотосинтетическую мембрану. Однако для жесткой фиксации пигментов два свободных аксиальных центра октаэдрического Mg2+ связываются с полипептидными боковыми цепями лигандов, приводя к трехточечному закреплению пигментов и, следовательно, к четко определенной пространственной ориентации.

порфиринового кольца обусловливает высокую способность хлоро-
филла к поглощению света.

Так, миллиметровый слой 1 мМ раствора хлорофилла поглощает около 90% падающего на него красного или
синего света (зеленый свет поглощается менее эффективно, что и определяет зеленый цвет растений). Для хлорофилла, как и для других пигментов,
характерно относительно длительное время, около 10−8
сек, нахождения в возбужденном состоянии,что важно для участия хлорофилла в фотохимических реакциях. У многих других пигментов, напри-
мер, у производных хлорофилла, у которых центральный атом магния заменен на медь или марганец, это время гораздо ниже вследствие чрезвычайно быстрого перехода энергии электронного возбуж-
дения в тепло.