Презентация на тему Цитогенетические методы

на уровне клетки и субклеточных структур, главным образом хромосом.
Цитогенетические

методы предназначены для изучения структуры хромосомного набора или отдельных хромосом.
Основа цитогенетических методов — микроскопическое изучение хромосом человека.
Микроскопические методы исследования хромосом человека начали использоваться в конце XIX века.
Термин «цитогенетика» введен в 1903 г. Уильямом Саттоном.

гг. XX в. для изучения морфологии хромосом человека, подсчета

хромосом, культивирования лейкоцитов для получения метафазных пластинок.
В 1959 г. французские ученые Д. Лежен, Р.Тюрпен и М. Готье установили хромосомную природу болезни Дауна. В последующие годы были описаны многие другие хромосомные синдромы, часто встречающиеся у человека.
В 1960 году Р. Мурхед с соавт. разработали метод культивирования лимфоцитов периферической крови для получения метафазных хромосом человека, что позволило обнаруживать мутации хромосом, характерные для определенных наследственных болезней.

диагностика наследственных заболеваний, связанных с геномными и хромосомными мутациями,
исследование

мутагенного действия различных химических веществ, пестицидов, инсектицидов, лекарственных препаратов и др.

Обьектом цитогенетичеких исследований могут быть делящиеся соматические, мейотические и интерфазные клетки.

по клинической симптоматике (для подтверждения диагноза)
Наличие у ребенка множественных

ВПР, не относящихся к генному синдрому
Многократные спонтанные аборты, мертворождения или рождения детей с ВПР
Нарушение репродуктивной функции неясного генеза у женщин и мужчин
Существенная задержка умственного и физического развития у ребенка

транслокации у родителей, при рождении предыдущего ребенка с хромосомной

болезнью)
Подозрение на синдромы, характеризующиеся хромосомной нестабильностью
Лейкозы (для дифференциальной диагностики, оценки эффективности лечения и прогноза лечения)
Оценка мутагенных воздействий различных химических веществ, пестицидов, инсектицидов, лекарственных препаратов и др.

более четкую структуру и доступны для изучения. Обычно исследуют лейкоциты

периферической крови человека, которые помещают в специальную питательную среду, где они делятся. Затем готовят препараты и анализируют число и строение хромосом.

(простые, дифференциальные и флуоресцентные)
Молекулярно-цитогенетические методы – метод цветной гибридизации

in situ (FISH)

классические методы кариотипирования;  - молекулярно-цитогенетические методы.
До недавнего времени диагностика хромосомных болезней базировалась

на использовании традиционных методов цитогенетического анализа.

культуры крови, а также клетки костного мозга и культуры

фибробластов.
Кровь с антикоагулянтом центрифугированиют для осаждения эритроцитов, а лейкоциты инкубируют в культуральной среде 2-3 дня. К образцу крови добавляют фитогемагглютинин, так как он ускоряет агглютинацию эритроцитов и стимулирует деление лимфоцитов.
Наиболее подходящая фаза для исследования хромосом — метафаза митоза, поэтому для остановки деления лимфоцитов на этой стадии используют колхицин. Добавление этого препарата к культуре приводит к увеличению доли клеток, находящихся в метафазе, то есть в той стадии клеточного цикла, когда хромосомы видны лучше всего. Каждая хромосома реплицируется и после соответствующей окраски видна в виде двух хроматид, прикреплённых к центромере, или центральной перетяжке. Затем клетки обрабатывают гипотоническим раствором хлорида натрия, фиксируют и окрашивают.
Для окраски хромосом чаще используют краситель Романовского-Гимзы, 2% ацеткармин или 2% ацетарсеин. Они окрашивают хромосомы целиком, равномерно (рутинный метод) и могут быть использованы для выявления численных аномалий хромосом человека.

три пары самых крупных хромосом: две метацентрические и 1

субметацентрическая.
Группа В – (4-5) – две пары длинных субметацентрических хромосом.
Группа С (6-12) – 7 пар субметацентрических аутосом среднего размера и Х-хромосома.
Группа D (13-15) – три пары средних акроцентрических хромосом.
Группа E (16-18) – три пары метацинтрическая и субметацентрические хромосомы.
Группа F (19-20) – две пары маленьких метацентрических хромосом.
Группа G (21-22 и Y) – две пары мелких акроцентрических хромосом и Y-хромосома.

выявления структурных нарушений (аберраций).
При рутинной окраске достоверно можно идентифицировать

только группу хромосом, при дифференциальной – все хромосомы

Парижской классификациями
A
B
C
D
E
F
G

с исследованием под флуоресцентным микроскопом. Чаще всего применяется для

исследования Y-хромосом.
G-окрашивание — модифицированное окрашивание по Романовскому — Гимзе. Чувствительность выше, чем у Q-окрашивания, поэтому используется как стандартный метод цитогенетического анализа. Применяется при выявлении небольших аберраций и маркерных хромосом (сегментированных иначе, чем нормальные гомологичные хромосомы)
R-окрашивание — используется акридиновый оранжевый и подобные красители, при этом окрашиваются участки хромосом, нечувствительные к G-окрашиванию.
C-окрашивание — применяется для анализа центромерных районов хромосом, содержащих конститутивный гетерохроматин.
T-окрашивание — применяют для анализа теломерных районов хромосом.

специфичны для каждой хромосомы и имеют разную интенсивность окраски.

FISH)
- спектральное кариотипирование, состоящее в окрашивании хромосом

набором флуоресцентных красителей, связывающихся со специфическими областями хромосом. В результате такого окрашивания гомологичные пары хромосом приобретают идентичные спектральные характеристики, что существенно облегчает выявление таких пар и обнаружение межхромосомных транслокаций, то есть перемещений участков между хромосомами — транслоцированные участки имеют спектр, отличающийся от спектра остальной хромосомы.

FISH)
Флюоресце́нтная гибридиза́ция in situ, или метод FISH — цитогенетический

метод, который применяют для детекции и определения положения специфической последовательности ДНК на метафазных хромосомах или в интерфазных ядрах in situ.
При флюоресцентной гибридизации in situ используют ДНК-зонды (ДНК-пробы), которые связываются с комплементарными мишенями в образце. В состав ДНК-зондов входят нуклеозиды, меченные флюорофорами (прямое мечение) или такими конъюгатами, как биотин или дигоксигенин (непрямое мечение).

пластинка с филадельфийской хромосомой. Хромосомы окрашены в синий цвет, локус

ABL1 - красный цвет, локус BCR - зелёный цвет. Вверху слева - хромосома с перестройкой, отмечена красно-зеленой точкой.

ген ABL1 (хромосомa 9) объединяется с геном BCR (хромосомы 22) – образуется химерный ген BCR-ABL1.

окрашивании хромосом набором флуоресцентных красителей, связывающихся со специфическими областями

хромосом. В результате такого окрашивания гомологичные пары хромосом приобретают идентичные спектральные характеристики, что существенно облегчает выявление таких пар и обнаружение межхромосомных транслокаций, то есть перемещений участков между хромосомами — транслоцированные участки имеют спектр, отличающийся от спектра остальной хромосомы.

делеция 9-й хромосомы.

Маркировка участков хромосом дана как по

комплексам поперечных меток (классическая кариотипизация, полоски), так и по спектру флуоресценции (цвет, спектральная кариотипизация).