Презентация на тему Принципы лабораторной диагностики нарушений свертывающей системы крови у детей

гематологии ПФ РНИМУ им Н.И.Пирогова

Электив «Значение исследований крови в

клинической практике»

д.м.н., профессор С.А.Румянцев

исследований
Кровь рекомендуется брать:
«бабочкообразной» иглой в градуированную силиконированную стеклянную или

пластиковую пробирку, содержащую антикоагулянт;
в градуированный пластиковый шприц, содержащий антикоагулянт;
в моноветт - коммерческая аспирационная система (градуированный шприц), содержащая антикоагулянт;
в вакутейнер - коммерческая система (пробирка с определенным отрицательным давлением для взятия точного объема крови), содержащая антикоагулянт ;
в специальные пробирки для транспортировки крови для исследования гемостаза. Например, пробирка СТАД содержит цитрат натрия (0,105 М), теофиллин, аденозин и дипиридамол. Три последних вещества предотвращают активацию тромбоцитов.

исследований
Кровь в пробирке необходимо тщательно перемешать, перевертывая пробирку, при

этом не допускается образования пены. Нельзя трясти пробу, так как это может вызвать денатурацию белков и активацию тромбоцитов.
Сразу же после взятия крови происходит из­менение активности компонентов системы свертывания и фибринолиза. В пробе, не закрытой пробкой, возрастает рН из-за потери СО2. Следствием этого является увеличение времени свер­тывания. На стабильность рН пробы влияет бу­ферная система эритроцитов, а также использо­вание буферных растворов цитрата. В пробе кро­ви, хранящейся при комнатной температуре и зак­рытой пробкой, не происходит заметных измене­ний в результатах ПВ и АЧТВ. Эффект физиоло­гического забуферивания за счет эритроцитов исчезает в открытой пробирке при попадании в нее атмосферного воздуха.
Согласно международным рекомендациям срок доставки проб в лабораторию (ARUP Laboratories, 2002) для исследования показателей гемостаза не должен превышать 45 минут после взятия крови у пациента. Стабилизированную кровь до центрифугирования (в том числе и в процессе транспортировки) хранят при комнатной температуре (+18... +25 °С). Транспортировка крови на большие расстоя­ния и ее частое встряхивание искажают резуль­таты исследования. Кровь нельзя хранить во льду , так как это может привести к холодовой активации фактора XII (процесс запускается через контактную фазу и развивается достаточно часто) и вызвать значительные изменения функции тромбоцитов.

или плазмы перед проведением коагуляционных тестов позволяет избежать многих

ошибок, связанных с преаналитическими погрешностями.
Неправильное соотношение кровь/цитрат можно определить, если объем крови в пробирке меньше или больше, чем требуемый. При малом объеме крови будет зарегистрировано ложное удлинение коагуляционных тестов.
Пробы с видимыми сгустками фибрина. В за­висимости от степени свертывания коагуляционные тесты могут быть укорочены, нормальны или удлинены.
Гемолиз может произойти при хранении неотцентрифугированной крови или после центри­фугирования. В таких тестах результаты варьи­руют в зависимости от степени гемолиза. Если гемолиз присущ in vivo, что подтверждается взя­тием нового образца, то тесты могут выполнять­ся для оценки гемостатической ситуации. Если гемолиз произошел после взятия крови, то такие образцы следует отбросить, чтобы не получить ложных результатов.

исследований

и активированное частичное тромбопластино-вое время (АЧТВ), Разведе­ние крови антикоагулянтом

сопровождается удлинением ПВ (снижение ПТ) и АЧТВ, при разведении меньшем, чем 8:1, это приводит к регистрации ложноположительного результата

преаналитическая ошибка. Большее количество антикоагулянта по отношению к плазме

может вызвать значительное изменение показателей коагулограммы

гематокрите.
Соотношение объема плазмы и раствора цитрата при разном

гематокрите. При высоком гематокрите создаются условия избыточного количества антикоагулянта и слишком сильного разведения плазмы с получением результатов, соответствующих состоянию гипокоагуляции. Наоборот, при низком гематокрите есть высокая вероятность регистрации «ложной» гиперкоагуляции

автоматических анализато­рах тромбоциты распознаются по размерам в ди­апазоне 2-20

фл.
Автоматические счет­чики позволяют получать достаточно надежные результаты по количеству тромбоцитов.
Средний объем тромбоцита (MPV)
У здоровых людей MPV равен 6-12 фл и нахо­дится в обратной зависимости от числа тромбоцитов. Такое соотношение определяет постоянство тромбоцитарной массы в циркулирующей крови.
MPV увеличивается с возрастом; отмечено, что у мужчин MPV несколько выше, чем у женщин.
Дисперсия распределения тромбоцитов по объему (PDW)
PDW - показатель, являющийся мерой гетерогенности размеров (анизоцитоза) тромбоцитов. Величина PDW в среднем составляет 10-15%.
PDW может применяться для дифференци­альной диагностики. Так, увеличение PDW свы­ше 10,5% было обнаружено у 50% больных эссенциальной тромбоцитемией, у 21% пациентов с реактивным тромбоцитозом и лишь у 14% здоро­вых людей.

нанесения стандартной раны кожи до момента прекращения вытекания крови.

Оно характеризует функциональную активность тромбоцитов и взаимодействие тромбоцитов с сосудистой стенкой.
Время кровотечения не выявляет всех тромбоцитарных нарушений, этот скрининговый тест позволяет заподозрить тромбоцитопатии различного генеза, болезнь Виллебранда и нарушения проаггрегантных свойств сосудистой стенки.

использованием индукторов агрегации. Требования к пробам критичны. Исследование агрегации

проводят на плазме, богатой тромбоцитами (ПБТ, английская аббревиатура PRP).

Принцип оценки индуцированной агрегации.
А - до агрегации; Б -агрегация. После добавления индуктора агрегации и формирования агрегатов тромбоцитов происходит просветление суспензии

оценки гемостаза.
Принцип ТЭГ:
исследуемый образец помещается между двумя

поверхностями, на одну из ко­торых подаются вращательно-колебательные движения, а другая соединена с устройством, принимающим и фиксирующим колебания.
После добавления в образец активатора свертывания крови начинается образование сгустка.
По мере полимеризации фибрина колебания с одной поверхности начинают передаваться на другую и регистрироваться.
Получающаяся кривая зависимости амплитуды колебаний от времени характеризует процесс свертывания крови, а позже фибринолиза .

ТЭГ, является:
Время до начала образования фибрина (г-время).
Время формирования сгустка

(к-время).
Максимальная амплитуда (зависит от концентрации фибриногена, количества и качества тромбоцитов, взаимодействия фибрина и тромбоцитов в сгустке).
Время лизиса тромба.

методы основаны на определении промежутка времени от добавления стартового

реактива, запускающего каскад свертывания плазмы, до момента образования сгустка (выпадения фибрина).
При постановке коагуляционных тестов необходимо перемешать плазму с реактивом до гомогенной суспензии и поддерживать стабильной температуру реакции.
Коагуляционные тесты - в настоящее время наиболее распространенный методический подход для оценки плазменного гемостаза в клинико-диагностических лабораториях.

коагулометрах используются несколь­ко принципов: механический, турбидиметричес-кий, оптико-механический. Каждый из

них име­ет свои преимущества и недостатки, которые важ­но знать при интерпретации результатов иссле­дований.
Ограничения коагуляционных методов:
Ограниченное время регистрации. Тест должен быть проведен в течение примерно 10- 200 с. Это возможно далеко не для всех анализов.
Далеко не все компоненты гемостаза можно исследовать по времени образования сгуст ка. Компоненты системы фибринолиза, ингибиторы не оказывают прямого влияния на время свертывания, и их количественная оценка не поддается исследованию клоттин говым методом.
Метод чувствителен к различным неспецифическим внешним воздействиям. Например, исследование активности ф.VIII клоттинговым методом невозможно у пациента, получающего терапию гепарином или непрямыми антикоагулянтами, хотя ни те ни другие не оказывают непосредственного влияния на этот фактор.
Метод малочувствителен для определения повышенной активности компонентов систе мы свертывания крови.
Для ряда тестов сложно создать устойчивые реактивы, удобные для применения в диагностических лабораториях. Существенной проблемой на этом пути является использование активаторов плазменных факторов, в частности использование на первом этапе активаторов протеолитических реакций. Активаторы могут быть нефизиологическими, которые имитируют твердую фазу поверхности

тромбоцитов.
АЧТВ.
Протромбиновое время (по Квику).
Тромбиновое время и/или фибриноген.

ПВ. Звездочкой зависимые факторы, на которые влияют антикоагулянты непрямого

действия

Концентрация фибриногена начинает влиять на результаты тестов при снижении ее ниже определенного порога. Как правило, эти тесты не позволяют количественно определить фибриноген или заподозрить уме­ренное снижение его концентрации

плазменного звена гемостаза

с тромбофилией. Это может быть связано с резистентностью фактора

V к активному протеину С, повышенным уровнем фактора VIII или активи­рованных факторов свертывания. Однако чаще всего укорочение АЧТВ объясняется нарушениями работы с кровью на преаналитическом этапе.
Удлинение А ЧТВ происходит при:
врожденном или приобретенном дефиците факторов II, V, VIII, IX, X, XI, XII, прекалликреина, ВМК;
снижении активности ф-VIII на фоне болезни Виллебранда;
лечении гепарином, гирудином или апротинином (ингибитор контактной фазы коагуляции);
присутствии в крови ПДФ, волчаночного антикоагулянта;
нарушении функции печени;
коагулопатии потребления (ДВС-синдром);
тяжелой дисфибриногенемии или афибриногенемии.

тест для оценки внешнего каскада свертывания плазмы.
ПВ обычно

используется для определения активности ф.VII, контроля за лечением непрямыми антикоагулянтами, при скрининге системы гемостаза, редко для количественного определения фибриногена (в автоматических коагулометрах, имеющих специальную программу)

значение изменения активности факторов